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Protein A/G Immunomagnetic Beads

Protein A/G Immunomagnetic Beads

产品编号 C0104B
TargetMol 的 Protein A/G 免疫沉淀磁珠采用生物纳米表面技术,将 Protein A/G 高密度定向包被到超顺磁性微球表面,可以用于蛋白质、蛋白质复合物、蛋白质核酸复合物和其他抗原的免疫沉淀(IP)。本品适用于细胞裂解物、细胞分泌上清、血清、腹水等样品中抗原的免疫沉淀反应。

本产品规格为溶液总体积。
规格价格库存数量
1 mL¥ 380现货
5 mL¥ 1,620现货
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实验操作小课堂
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TargetMol 的所有产品和服务仅用于科学研究,不能被用于人体,我们也不向个人提供产品和服务。

Handling Instruction | TargetMol 产品信息

Protein A/G 免疫沉淀磁珠 特性
粒径 2 μm
Human IgG 能力(Antibody Capacity) 0.5~0.6 mg/mL
磁珠浓度 10 mg/mL
保存溶剂 1×PBS,含 0.1%(w/v)BSA,0.1%(V/V)proclin-300
适用抗体种属 广谱抗体种属
应用推荐 IP, Co-IP, ChIP

Handling Instruction | TargetMol 产品特点

  1. 非特异性吸附低:相较于当前国际免疫磁珠市场上同类产品,本品具有更多的抗体结合位点,使用量更少,并且非特异性结合率低,能够快速高效地进行免疫沉淀实验。
  2. 高效率、高产量、低消耗:每毫升免疫沉淀磁珠结合 Human IgG 的能力可达到500 μg 以上,单个沉淀反应仅需25 μL 磁珠即可完成检测。
  3. 操作灵活、简便:微米级磁珠提供了超大比表面积,显著缩短了抗体与抗原吸附所需的平衡时间,使抗体吸附过程在15 min内完成,抗原沉淀操作在30 min内完成。
  4. 实验结果可靠、重复性高:简短的操作时间避免了长时间操作造成目标蛋白水解的风险,保证了目标蛋白的活性及蛋白复合物的完整性。

Handling Instruction | TargetMol 自备试剂

试剂 可选配方
结合缓冲液 Binding Buffer 1×PBS, 1%(v/v)TritonX-100, 0.01%(v/v) NP-40, 5%(v/v) Glycerol
洗涤缓冲液 Washing Buffer 50 mM Tris-HCl,0.1%(v/v) Tween-20,pH7.5
洗脱缓冲液 Elution Buffer 0.1M Glycine,0.1% (v/v) Tween-20,pH2.5
中和缓冲液 Neutralization Buffer 1 M Tris-HCl, pH 9.0

Handling Instruction | TargetMol 操作说明

1. 抗原样品制备
建议根据抗原样品的不同来源选择适当的预处理方式,以便将待检测抗原释放到样品溶液中。
1)血清样品:如果目标蛋白丰度较高,建议用Binding Buffer将血清样品稀释至目标蛋白终浓度为10~100 µg/mL,置于冰上备用,或于-20℃长期保存。
2)悬浮细胞样品:离心收集细胞(4℃, 500 g, 10 min),弃上清后称重,按每毫克细胞50 µL的比例用1× PBS洗涤两次。然后按每毫克细胞5~10 µL的比例加入Binding Buffer,同时加入蛋白酶抑制剂(1 mM PMSF 或蛋白酶抑制剂Cocktail C0001),混匀后置于冰上孵育10 min。离心收集上清液(4℃, 14000 g, 10 min),置于冰上备用,或于-20℃长期保存。
3)贴壁细胞样品:吸去培养基,按每1.0×10^5个细胞150 µL的比例用1×PBS洗涤两次。用细胞刮刀收集细胞,置于1.5 mL EP管,按每1.0×10^5个细胞20~30 µL的比例加入Binding Buffer,同时加入蛋白酶抑制剂,混匀后置于冰上孵育10 min。离心收集上清液(4℃, 14000 g, 10 min),置于冰上备用,或于-20℃长期保存。
4)大肠杆菌样品:离心收集大肠杆菌(4℃, 12000 g, 2 min),弃上清后称重,按每克(湿重)菌体10 mL的比例用1×PBS洗涤两次。然后按每克(湿重)菌体5~10 mL的比例加入Binding Buffer,同时加入蛋白酶抑制剂,重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃, 17000 g, 10 min),置于冰上备用,或于-20℃长期保存。
:以上方法制备的抗原样品适用于进行IP和Co-IP实验,如需进行ChIP实验,请另参照相关实验说明(如CST #9003)。

2. 磁珠预处理
1)将免疫沉淀磁珠用漩涡振荡器振荡1 min,使磁珠重新悬浮,取25~50 µL磁珠悬液放入1.5 mL EP管中。
2)加入200 µL Binding Buffer进行洗涤,将EP管放入磁性分离器,静置1 min,进行磁性分离,吸去上清液,取下EP管。重复上述洗涤步骤一次。
3)加入200 µL Binding Buffer重悬磁珠备用。

3. 抗体结合反应
1)抗体工作液的制备:将抗体样品用Binding Buffer稀释至终浓度为5~50 µg/mL,制备成抗体工作液,置于冰上备用。
2)抗体吸附:将步骤2中预处理的磁珠悬液进行磁性分离,吸去上清液。加入200 µL抗体工作液,迅速重悬磁珠,在室温下使用翻转混合仪或手工轻轻翻转EP管混合15 min,然后进行磁性分离,收集上清液,置于冰上备用以供后续检测。
3)洗涤:向EP管中加入200 µL Binding Buffer进行洗涤,轻轻用移液器吹打使磁珠-抗体复合物均匀分散,然后进行磁性分离,吸去上清液,取下EP管。重复上述洗涤步骤一次。

4. 抗体交联反应(可选操作)
如需同时洗脱抗体和目标抗原复合物,请跳过本步骤,直接进行步骤5。本步骤适用于需要单独洗脱目标抗原的实验,推荐使用BS3作为交联剂。具体实验操作请参照该试剂的说明书。

5. 抗原沉淀反应
1)抗原吸附:加入200 µL步骤1中制备的抗原样品,用移液器轻轻吹打,使抗原与磁珠-抗体复合物均匀分散。在室温下使用翻转混合仪或手工轻轻翻转EP管混合10 min,以确保抗原与抗体充分结合。如结合力较弱,可在室温下孵育1 h,或在4℃下孵育过夜。
2)洗涤与转移:将上述完成抗原吸附的磁珠-抗体-抗原复合物进行磁性分离,收集上清液,置于冰上以备后续检测。向EP管中加入200 µL Washing Buffer进行洗涤,用移液器轻轻吹打,使磁珠-抗体-抗原复合物均匀分散,然后进行磁性分离,吸去上清液,取下EP管。重复洗涤两次。最后,加入200 µL Washing Buffer,将磁珠-抗体-抗原复合物悬液转移至新的1.5 mL EP管中,并进行磁性分离,吸去上清液,取下EP管。
注:抗原洗脱前,需将磁珠转移到新的EP管,以避免将管壁上非特异性吸附的蛋白一同洗脱。

6. 抗原洗脱
提供以下两种抗原洗脱方案,用户可根据后续检测的需要选择不同的洗脱方法。
1)变性洗脱法:此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。向EP管中加入25 µL 1× SDS-PAGE Loading Buffer(自备),混合均匀,95℃加热5 min。然后进行磁性分离或者离心(室温,13000 g, 10 min),收集上清液,进行SDS-PAGE检测。
2)非变性洗脱法:此方法洗脱的样品保持原有的生物活性,可用于后续功能分析。向EP管中加入20 µL Elution Buffer,混合均匀,室温孵育10 min。然后进行磁性分离或者离心(室温,13000 g, 10 min),收集上清液至新的EP管,并立即加入1.0 µL Neutralization Buffer,将洗脱产物pH调节至中性,用于后续功能分析。

Handling Instruction | TargetMol 保存条件

4℃,2年。

Handling Instruction | TargetMol 注意事项

  1. 避免冷冻磁珠。磁珠应保存在储存溶液中,防止干燥。
  2. 为了减少磁珠的损失,每次磁性分离的时间不应少于1 min。
  3. 在从磁珠保存管中取出磁珠之前,应充分震荡以确保均匀悬浮。操作过程中注意避免产生气泡。
  4. 建议使用质量较好的移液器吸头和反应管,以避免因磁珠和溶液附着而造成损失。
  5. 为确保最佳实验效果,请选择特异性较强的抗体进行免疫沉淀反应。
  6. 操作者可根据实际需求,利用抗体结合反应步骤和抗原结合反应步骤中收集的上清液,检测抗体、抗原与磁珠的结合情况。
  7. 在IP实验中,不同类型的抗体和抗原结合的亲和力会有所不同。Binding Buffer和Washing Buffer也会影响抗体与抗原的结合效果。因此,如果使用本说明书推荐的缓冲体系未能获得理想的实验结果,操作者可以自行筛选和配制缓冲液进行实验。
  8. 虽然本磁珠表面包被的重组蛋白Protein A/G在极端条件下(如低pH、加热处理)几乎不会脱落,但仍不建议用于分子量约130 kDa目标蛋白的免疫沉淀实验。
  9. 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
  10. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。