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规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
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1 mL | ¥ 950 | 5日内发货 | |
5 mL | 询价 | 5日内发货 | |
10 mL | 询价 | 5日内发货 |
Oligo (dT) 磁珠 | 特性 |
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Oligo(dT) 偶联量 | ~ 500 pmol/mg 磁珠 |
粒径 | 1 µm |
mRNA 结合量 | 1-2 μg/mg磁珠 |
磁珠浓度 | 5 mg/mL |
保存溶液 | 1×PBS, 0.01% Tween-20, 0.1% proclin-300 |
以下为常用缓冲液配方,用户可根据需要自行调整。
试剂 | 可选配方 |
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结合缓冲液 Binding Buffer | 10 mM Tris-HCl (pH 7.5), 1.0 M NaCl, 1 mM EDTA |
裂解/结合缓冲液 Lysis/Binding | buffer 100 mM Tris-HCl (pH 7.5), 500 mM NaCl, 10 mM EDTA, 1% SDS, 5 mM DTT |
洗涤缓冲液A Washing Buffer A | 10 mM Tris-HCl (pH 7.5), 0.15 M NaCl, 1 mM EDTA, 0.1% SDS |
洗涤缓冲液B Washing Buffer B | 10 mM Tris-HCl ( pH 7.5), 0.15 M NaCl, 1 mM EDTA |
洗脱缓冲液 Elution Buffer | Nuclease-Free Water |
注:所有试剂需使用DEPC水配制,使用前平衡至室温。如出现沉淀,可在37℃预热10 min。
1. 磁珠预处理
1)将磁珠用漩涡振荡器振荡1 min,使磁珠重新悬浮。取所需量的磁珠悬液放入新的RNase-free离心管中,加入等体积的Binding Buffer,再次重悬磁珠。
2)将离心管放入磁性分离器,静置1 min,进行磁性分离,吸去上清液,取下离心管。
3)加入与最初相同体积的Binding Buffer重悬磁珠备用。
注:如从总RNA中提取mRNA,加入一半初始体积的缓冲液,使磁珠浓缩至10 mg/mL。
2. 从总RNA中纯化mRNA
以100 μg总RNA为例。
1)加入DEPC水将总RNA体积调整至100 μL,再加入等体积100 μL的Binding Buffer。
2)在65℃下加热2 min以解开RNA的二级结构,然后迅速将样品转移至冰上冷却。
3)将200 μL总RNA溶液加到100 μL已经洗涤过的Oligo (dT) 磁珠中,充分混匀。
注:按100 μg总RNA使用1 mg洗涤后并溶于100 μL结合缓冲液的磁珠,参见“磁珠预处理”。
4)在室温下旋转孵育10 min。进行磁性分离,吸去上清液,取下离心管。
5)加入200 μL Washing Buffer B,轻轻混匀。进行磁性分离,吸去上清液,取下离心管。重复此洗涤步骤一次。
注:确保每次洗涤过程中磁珠完全重悬,并在第二次洗涤后尽量去除上清液。
6)根据后续步骤需求,选择以下操作之一:
a)若不需要将mRNA从磁珠上洗脱,可用下游实验所需的酶缓冲液再洗涤磁珠一次。
b)若需洗脱mRNA:小心彻底去Washing Buffer B(注意不要吸取磁珠),然后加入10–20 μL无酶水或10 mM Tris-HCl (pH 7.5),充分混匀后在室温孵育2 min。接着进行磁性分离,将含mRNA的上清液转移到新的RNase-free离心管中。
注:如需提高洗脱效率,可在65℃-75℃加热洗脱。
3. 从细胞裂解物中分离mRNA
1)使用PBS清洗细胞悬液并离心以获得细胞沉淀,细胞沉淀可立即使用,或用液氮冷冻后置于-80℃备用。
2)在细胞沉淀(1-4×10^6 细胞)中加入1 mL Lysis/Binding buffer,反复吹打几次以确保完全裂解。裂解过程中的DNA释放会使溶液变粘,表示细胞已充分裂解。
3)进行DNA剪切步骤降低裂解液的粘度:将裂解液通过1-2mL注射器和21号针头处理3次。
注:反复剪切可能出现少量泡沫,短暂离心30 s可去除泡沫,泡沫不影响mRNA产量。
4)裂解物可以立即用于mRNA提取,也可冷冻保存在-80℃备用。
5)将清洗后的Oligo (dT) 磁珠放入磁力架中去除上清,加入裂解物并充分混匀。
6)在室温下旋转混合5 min促进mRNA结合,若溶液较粘稠可适当延长时间。进行磁性分离,吸去上清液,取下离心管。
7)对磁珠进行两次洗涤:先用1 mL Washing Buffer A清洗一次,然后再用1 mL Washing Buffer B清洗一次。确保在洗涤过程中彻底重悬磁珠,并在每次洗涤后完全移除上清。
8)根据后续步骤需求,选择以下操作之一:
a)如不需从磁珠中洗脱mRNA(例如后续进行固相cDNA合成),则用 500 μL Washing Buffer B洗涤磁珠一次,再用后续实验所需的酶缓冲液洗涤一次。
b)如需从磁珠中洗脱mRNA,小心彻底去Washing Buffer B(注意不要吸取磁珠),然后加入10–20 μL无酶水或10 mM Tris-HCl (pH 7.5),充分混匀后在65°C-75°C孵育2 min。接着进行磁性分离,将含mRNA的上清液转移到新的RNase-free离心管中。
注:不同组织/细胞中的mRNA含量可能存在差异。哺乳动物细胞的RNA含量约为每个细胞10-30 pg,其中mRNA占比约1-5%。
4℃,2年。
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