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Mouse CD8+ Cell Isolation Kit (positive selection)

Mouse CD8+ Cell Isolation Kit (positive selection)

产品编号 C0068
TargetMol 的小鼠 CD8+ 细胞分选试剂盒(阳选)提供超顺磁性微珠,共价包被单克隆抗体,对主要表达于鼠辅助性/诱导性 T 细胞的 CD8 膜抗原具有特异性,原理是利用 CD8 Capture Antibody 对 CD8+ 细胞进行标记,然后通过 Releasable Beads 对目标细胞进行捕获,再用 Beads Release Buffer 将磁珠从细胞表面解离,从而得到无磁珠标记的小鼠 CD8+ 细胞。这种快速、温和的分离方法无需使用色谱柱且有助于确保分离出的 CD8+ 细胞的纯度、回收率和存活率都很高。分选得到的 CD8+ 细胞可应用于下游的分子生物学和细胞生物学实验。
规格价格库存数量
2 mL (for 1×10^9 cells)¥ 3,800现货
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实验操作小课堂
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TargetMol 的所有产品和服务仅用于科学研究,不能被用于人体,我们也不向个人提供产品和服务。

Handling Instruction | TargetMol 细胞分选的产品推荐

  1. 小鼠细胞
样本类型 脾脏 淋巴结 外周血 骨髓 肿瘤组织
CD3+ T细胞 C0061 C0061 / / /
CD4+细胞 C0062(首选),C0067(可选) C0062(首选),C0067(可选) C0067 / C0067
CD8+细胞 C0063(首选),C0068(可选) C0063(首选),C0068(可选) C0068 / C0068
中性粒细胞 C0064 / C0064 C0064 /
  1. 人源细胞
样本类型 外周血 脐带血
CD3+ T细胞 C0065 /
CD3+ T细胞 C0066 C0066

Handling Instruction | TargetMol 产品组成

产品编号 产品名称 产品包装 (for 1×10^9 cells)
C0068-1 CD8 Capture Antibody 200 μL
C0068-2 Releasable Magnetic Beads 2 mL
C0068-3 Magnetic Beads Release Buffer 40 mL

Handling Instruction | TargetMol 产品特点

  • 纯度高,可达 95% 以上。
  • 样本适用性广,可从 PBMC或者全血中直接捕获目的细胞。
  • 磁珠释放技术使得细胞不含微珠、无抗体标记,不影响下游实验。

Handling Instruction | TargetMol 产品应用

  • 适用从小鼠淋巴器官或其他组织,如脾脏和淋巴结中分选CD8+细胞。

Handling Instruction | TargetMol 操作说明

以分选小鼠脾脏中的CD8+ T细胞为例:

  1. 制备单细胞悬液:将脾脏放置在70 μm的细胞筛网上研磨,并用预冷的PBS冲洗筛网,将细胞悬液收集至50 mL离心管中,500 g离心5 min。
  2. 离心结束后,弃去上清液,加入5 mL红细胞裂解液 (ACK) 并在室温下裂解5 min。随后加入20 mL PBS,500 g离心5 min。
    注:红细胞裂解的时间和用量可根据所用裂解液进行调整,少量红细胞的残留对后续分选和细胞纯度影响不大。
  3. 离心结束后,弃去上清液,将脾细胞重悬于PBS中,并用70 μm的细胞筛网过滤。细胞计数完成后,再次以500 g离心5 min。
    注:为避免组织碎片和细胞团块影响后续分选的纯度,细胞悬液需经过细胞筛网过滤。
  4. 离心结束后,弃去上清液,将细胞重悬于分选缓冲液中,并调整细胞浓度至1×10^8个细胞/mL。
    注:分选缓冲液推荐配方:PBS,含有2 mM EDTA和2% FBS;或PBS,2 mM EDTA和0.5% BSA。缓冲液需预先经0.22 μm滤膜过滤灭菌。
  5. 将500 μL的细胞悬液(含5×10^7个细胞)加入无菌流式管底部,再加入10 μL CD8 Capture Antibody,混匀后在4°C下孵育15 min。
    注:将细胞加入流式管底部时,避免沿管壁添加。若分选更多细胞,CD8 Capture Antibody的用量需按比例增加。根据磁力架的不同,也可使用离心管进行细胞分选。
  6. 磁珠预处理:涡旋振荡重悬磁珠,将所需量的磁珠移至1.5 mL离心管中,加入1 mL分选缓冲液,10000 g离心1 min,弃去上清。重复以上洗涤步骤一次。加入与原体积相同的分选缓冲液重悬磁珠。若使用20 μL磁珠进行清洗,则清洗后用20 μL分选缓冲液重悬。
  7. 细胞孵育结束后,在流式管中加入100 μL经过预处理的Releasable Magnetic Beads,混合均匀,4°C下孵育15 min。
    注:若分选的细胞数量较多,Releasable Magnetic Beads的用量需按比例增加。若分选的细胞少于1×10^7个,则应将细胞悬液体积补至100 μL,并加入2 μL CD8 Capture Antibody和20μL Releasable Magnetic Beads。
  8. 孵育结束后,在流式管中加入2.5 mL分选缓冲液,用移液器轻轻吹打混匀5次,避免剧烈振荡或上下颠倒混匀。将装有细胞的流式管置于磁力架上静置5 min。
  9. 弃去上清液。从磁力架取下流式管,迅速加入2 mL分选缓冲液,使用移液器多次轻轻吹打以重新分散磁珠。然后将流式管重新放回磁力架,静置5 min。
  10. 重复以上洗涤步骤两次。
    注:充分的清洗有助于确保后续洗脱过程中获得高纯度的目标细胞。
  11. 磁吸结束后,弃去上清液。取下流式管,迅速加入1 mL Magnetic Beads Release Buffer重悬磁珠,确保磁珠不干燥,将磁珠悬液转移到1.5 mL离心管中,在室温下旋转孵育10 min。
    注:当分选的细胞数量不同,可以相应调整Magnetic Beads Release Buffer的体积。如果分选的细胞数量少于1×10^7,使用200 μL Magnetic Beads Release Buffer进行洗脱。
  12. 孵育结束后,使用移液器反复吹打至少10次,将磁珠悬液转移到一个新的流式管中,加入分选缓冲液至2.5 mL,轻轻吹打混匀后,将流式管放置在磁力架上静置5 min。
  13. 此时上清液中含有目标细胞,将上清液转移至一个15 mL离心管中备用。迅速加入1 mL Magnetic Beads Release Buffer重悬磁珠,防止其干燥,并将磁珠悬液转移至1.5 mL离心管中,在室温下旋转孵育10 min。
  14. 重复细胞洗脱(步骤12)一次,保留上清液。
  15. 将第二次洗脱后的上清液与第一次的上清液混合,500 g离心5 min,弃去上清液,即可获得无磁珠标记的CD8+细胞。
  16. 根据实验要求洗涤细胞后,将其重悬于所需的缓冲液或培养基中,便可用于后续的分子生物学或细胞生物学实验。

Handling Instruction | TargetMol 阴选法和阳选法的比较

磁性细胞分选技术 阴选法 阳选法
样本类型 多样 多样
捕获方式 磁珠结合非目的细胞 磁珠结合目的细胞
是否需要解离 不需要 需要
目的细胞是否有抗体标记
细胞纯度 >97% >95%
细胞活性
特点 目的细胞纯度高;细胞无抗体、无磁珠残留;细胞活性更好,适用于下游功能实验。 样本范围更广泛

Handling Instruction | TargetMol 保存条件

4℃,2年。

Handling Instruction | TargetMol 注意事项

  1. 避免冷冻试剂盒各组分。磁珠应保存在储存溶液中,防止干燥。
  2. 在从磁珠保存管中取出磁珠之前,应充分震荡以确保均匀悬浮。操作过程中注意避免产生气泡。
  3. 建议使用质量较好的移液器吸头和反应管,以避免因磁珠和溶液附着而造成损失。
  4. 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。
  5. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。