Magrose Beads COOH (30-150 μm)

• 表面活性基团含量丰富，Magrose COOH 基团 ~1000 μmol/g，确保高效的目标物质结合能力和极低的非特异性吸附
• 磁珠分散均匀，操作性好，能够保持稳定的磁响应性和良好的重悬性。
• 磁珠的物理化学稳定性及批次间重复性良好，批间氨基含量的变异系数 CV＜5%，确保实验结果的稳定性和可靠性。
• 目标物质结合量高，非特异性吸附低，专用于分离、纯化领域。

• 蛋白纯化：利用磁珠表面的功能基团，可以高效纯化目标蛋白，从而简化蛋白质研究和生产过程。
• 免疫检测：磁珠能够与抗体偶联，用于捕获和检测特定抗原，显著提高免疫分析的灵敏度和特异性。
• 药物筛选和输送：磁珠在药物筛选中可用于高通量筛选技术，帮助识别潜在药物分子，还可以作为药物输送载体，通过磁场控制将药物精准送达靶向部位。

磁珠与生物分子的偶联方法，以蛋白A为例：

1. 磁珠预处理
1)将羧基磁珠用漩涡振荡器振荡充分混匀，然后使用移液器吸取100 µL磁珠悬液置于1 mL EP管中。
2)将EP管放入磁性分离器，静置1 min，进行磁性分离，吸去上清液，取下EP管。
3)向EP管中加入200 µL MEST溶液（100 mM MES，pH 5.0，0.05% Tween 20），洗涤2次，每次磁性分离后吸去上清液。

2. 磁珠表面羧基活化
1)向EP管中迅速加入新鲜配制的100 µL EDC 溶液（10 mg/mL，以上述MEST溶液作分散剂）和100 µL NHS（10 mg/mL，以上述MEST溶液作分散剂），漩涡混匀使磁珠充分悬浮。
2)25℃活化30 min。反应期间保持磁珠悬浮，可使用垂直混合仪进行混匀。
注：经过上述步骤处理后，磁珠表面的羧基已经被成功活化，此时可以与带有伯氨基的生物配体进行共价偶联。由于活化状态不稳定，不宜长时间保存，建议尽快进行偶联操作，以确保反应效率和偶联效果。

3. 磁珠与生物配体的共价偶联
1)进行磁性分离，吸去上清液。向EP管中加入50~200 µg生物配体（具体用量、浓度及缓冲液类型需根据实验优化）。
注：配体缓冲液可参考如下几种：100 mM 2-吗啉乙磺酸缓冲液，pH 4.8；200 mM 碳酸氢钠缓冲液，pH 8.3；50 mM 硼酸盐缓冲液，pH8.5；100 mM 磷酸盐缓冲液；100 mM 氯化钠溶液，pH 7.4 等。缓冲液中可加入0.05% Tween 20以提高磁珠分散性，避免缓冲体系中存在除生物配体以外含有伯氨基的试剂。
2)轻柔混匀，25℃偶联2 h，或25℃偶联1 h后放置4℃过夜。偶联保持磁珠悬浮，可使用垂直混合仪进行混匀。

4. 偶联后封闭
1)进行磁性分离，吸去上清液。加入200 µL PBST 溶液（pH 7.2，含1% BSA）重悬磁珠，必要时可使用超声波辅助。
2)25℃反应1 h，以封闭磁珠表面非特异性吸附位点，期间保持磁珠悬浮，可使用垂直混合仪进行混匀。

5. 保存
1)进行磁性分离，吸去上清液。用200 µL PBS溶液（pH 7.2）或保存溶液洗涤3次。
2)然后重新悬浮磁珠于保存溶液中（根据需要调整磁珠浓度）。磁珠保存于4℃，必要时可在保存溶液中加入0.02%（W/V）叠氮化钠（NaN3）以抑制细菌生长。

4℃，2年。

1. 避免对磁珠进行冷冻、干燥和高速离心等操作。
2. 为了减少磁珠的损失，每次磁性分离的时间不应少于1 min。
3. 从磁珠保存管中取出磁珠之前，应充分震荡以确保均匀悬浮。操作过程中注意避免产生气泡。
4. 建议使用质量较好的移液器吸头和反应管，以避免因磁珠和溶液附着而造成损失。
5. 磁珠与溶液混合过程中，如果溶液粘稠导致翻转离心管无法重悬磁珠，可以使用移液器吹打或瞬时漩涡混合，使磁珠充分重悬。
6. 可根据需求，用纯化水或缓冲液磁吸洗涤磁珠2~3次，去除保存液中乙醇。
7. 本磁珠未经活化，需先根据参考方法活化之后才能进行偶联操作。
8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。
9. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。