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规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
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5 mL | 询价 | 5日内发货 | |
10 mL | 询价 | 5日内发货 |
GST Tag 琼脂糖凝胶 | 特性 |
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基质 | 高度交联的4%琼脂糖凝胶 |
粒径 | 45-135 μm |
配体 | 谷胱甘肽 |
载量 | >30 mg GST蛋白 |
耐压流速 | 80∽150 cm/h(0.3 MPa,3 bar) |
磁珠浓度 | 50%(v/v) |
保存溶液 | 含20%乙醇的1×PBS |
1. 缓冲液准备
以下为常用的缓冲液成分,适用于多数GST融合蛋白的纯化,使用时可根据需要进行调整。缓冲液在使用前最好使用0.22 μm或0.45 μm滤膜过滤除菌。
1)Binding/Washing Buffer:140 mM NaCl,2.7 mM KCl,10 mM Na2HPO4,1.8 mM KH2PO4,pH 7.4。
2)Elution Buffer:50 mM Tris-HCl,10 mM 还原型谷胱甘肽,pH 8.0。
配制步骤:取50 mL 0.1 M Tris溶液,加入0.307 g还原型谷胱甘肽,然后用0.1 M 盐酸调整pH至8.0,最终用去离子水补至100 mL。可根据实验需求等比例缩放。
注:
a)还原型谷胱甘肽易氧化,Elution Buffer应现用现配,防止氧化,避免一次性全部溶解。
b)大多数GST融合蛋白使用含有10 mM还原型谷胱甘肽的Elution Buffer即可洗脱,对于结合能力强的GST融合蛋白,建议延长洗脱时间、增加洗脱次数,或提高谷胱甘肽浓度。
c)Binding/Washing Buffer和Elution Buffer可根据需要加入1-5 mM EDTA、1-10 mM DTT、0.1-1.0% Triton X-100或0.1-1.0% Tween 20,以提高蛋白稳定性。
2. 蛋白样品处理
1)大肠杆菌、酵母等细胞内表达蛋白:用适量Binding/Washing Buffer稀释表达细胞,加入蛋白酶抑制剂(如1 mM PMSF或蛋白酶抑制剂Cocktail C0001),重悬细胞后冰浴超声裂解细胞,即得到粗蛋白样品。如果样品过于粘稠,可根据需要在粗样品中加入适量核酸酶,冰浴30 min,以降解核酸。也可以根据实际需要对蛋白样品进行离心操作。
2)动物细胞胞内表达蛋白:取适量动物细胞,用适量PBS洗涤1次,吸去上清液,再用适量含1%(v/v) Triton X-100或1%(v/v) NP-40的Binding/Washing Buffer重悬,加入蛋白酶抑制剂,冰浴10 min,即得到粗蛋白样品。
3)胞外表达蛋白:取胞外表达的上清液,用等量的Binding/Washing Buffer稀释,即得到粗蛋白样品。
3. GST融合蛋白纯化
1)轻轻重悬GST Tag 琼脂糖凝胶。
2)吸取2 mL的琼脂糖凝胶加入层析柱中,使用10 mL Binding/Washing Buffer对凝胶进行平衡。重复此步骤一次。
3)关闭层析柱下端,将制备好的含GST标签蛋白的上清液倒入层析柱中,拧紧上端盖口,建议使用封口膜密封。将层析柱放在混匀仪上,室温孵育1-2 h;也可在2∽8℃下孵育2-4 h或过夜。
4)孵育结束后,打开层析柱的上下端口,待上清液完全流出后收集,作为流穿液,存放于2∽8℃备用,用于后续检测。
5)立即向层析柱中加入10 mL Binding/Washing Buffer,收集洗杂液,并存放于2∽8℃备用。重复此步骤四次。
6)加入1 mL Elution Buffer,用1.5 mL的离心管收集洗脱液。分别收集5∽10管。
7)将流穿液、洗杂液、洗脱液以及原始样品进行SDS-PAGE,检测纯化效果。
注:在保存目的蛋白之前,应进行透析或超滤以去除游离的谷胱甘肽,然后分装并冷冻保存于-80℃。
4. 凝胶清洗
GST Tag 琼脂糖凝胶可以重复使用而无需再生,但随着非特异性蛋白的累积和蛋白聚集,可能会导致流速减慢和结合能力下降。在这种情况下,需要对凝胶进行清洗。
1)去除沉淀或变性物质:使用2倍柱体积的6 M盐酸胍溶液进行清洗,随后立即用5倍柱体积的PBS(pH 7.4)进行清洗。
2)去除疏水性吸附导致的非特异性结合:用3-4倍柱体积的70%乙醇或2倍柱体积的1% Triton X-100进行清洗,之后立即用5倍柱体积的PBS(pH 7.4)进行清洗。
4℃,2年。
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